血浆样品,经过硫酸胺分段盐析除高丰度蛋白,直接以水化液溶解得到的沉淀,7 cm pH4-7的胶条,bradford法定量,上样量400 ug(看起来仿佛定量偏高了不少),银染。
做药动实验的时候,一般都直接采集的血液置放含有抗凝剂的试管中,混合后,离心,所的的上清液既为血浆。全血则是不经离心操。我想知道全血和血浆在做药动时候,测定血药浓度时区别在那里?特别是全血净化
各位大虾,本人最近要做艾滋病药物在细胞内的浓度测定,请问各位有做过细胞内药物浓度测定吗,我以前一直做的是血浆样品,没做过细胞的,头大呀,请做过这方面的高手赐教你!
提取RNA然后逆转录成cDNA进行保存还是怎样保存样品的?血浆RNA提取时血浆的用量,trizol-ls用量和提取步骤,以及相应的qPCR体系),希望能得到大家的帮助,在下非常感谢。[抱拳]
血浆样品提取时,破坏蛋白与药物分子之间疏水作用的方法有哪些?(目前遇到的问题是,血浆中检测不到药物,有一篇文献见到这个药和人血清白蛋白结合紧密,且主要是疏水作用力,所以现在想知道有什么方法可以破坏
最近做盐酸哌唑嗪的兔血浆样品处理,用的盐酸特拉唑嗪做内标,流动相是甲醇:20mmolNH4AC(PH4.30)=40:60,但HPLC走出来主峰和内标峰都是前沿峰,大家说说怎么办?
我在用6%的高氯酸做血浆样品的前处理,但用1:1高氯酸用量沉淀后的上清,仍可用甲醇沉淀出蛋白来,并且用量血清:高氯酸1:1.5用量组的上清可以沉淀出更多的蛋白,求助各位大佬,这种情况该怎么处理
最近用RP-HPLC做一挥发油在大鼠体内的药动试验,关于血浆样品处理,用GC-MASS做时,样品用正己烷萃取,然后用氮气吹干正己烷层,然后又乙醇复溶,可以测到目标化合物。可是HPLC上测不到,不知
血浆样品提取时,破坏蛋白与药物分子之间疏水作用的方法有哪些?(目前遇到的问题是,血浆中检测不到药物,有一篇文献见到这个药和人血清白蛋白结合紧密,且主要是疏水作用力,所以现在想知道有什么方法可以破坏
还有一个问题,刚开始在将狗血离心得到血浆的过程中离心3000转/分 5min是不是力度不够所以血浆样品不纯,有溶血现象,最终有上述前处理的麻烦??谢谢大家!!