我的样品是一个活化酯,不溶于水、甲醇,溶于乙腈,我走反相色谱,流动相采用90%乙腈,样品分解成两个峰,采用纯乙腈作为流动相,峰形可以,但是主峰后面的杂质峰会越走越大,杂质峰不稳定,采用面积归一法计算
我在做一个五环三萜皂苷类药物的含量测定,第一次用C18柱,甲醇-水洗脱,紫外检测,203NM末端吸收.后来有用蒸发光散色,甲醇-水洗脱,却没有出峰,再用纯甲醇洗,有一个很宽的峰.想请教一下五环
求助各位大佬乙腈:水 梯度洗脱,在32min左右基线开始往上爬,原始的样品用流动相溶解后基线不升高,但乙酸乙酯提取物经过制备型高效液相接的样品,有一个成分开始基线升高。图紫色为纯流动相峰,黑色为样品
我用的是Agilent1200,用光谱中的峰纯度。对照品肯定是纯物质,但分析后是纯度因子低于阈值。阈值是系统自己计算的。请高手指点一下,峰纯度运用时,应如何设置。它 到底能不能反映样品的纯度
在做SNP,酶切之后有的很容易判断,但有的条带很淡,很难判断是杂合还是纯合(见图1),最后拿样品去测序,得到的峰图有很信号很低的重叠峰。而且报告序列是T(峰图见图2)。之前有很明确的杂合性,酶切与峰
配备质谱检测器。这种情况下应该怎么办?有同行说把样品稀释了弄个纯峰出来;也有同行说不按照软件得说明,自己定个标准(例如软件说要看最小峰纯度指数,自己定的话看相似度或者看阈值)。咋觉得这种做法有点像故事
我最近新买了一根磺酸基阳离子交换色谱柱,用纯甲醇和10%甲醇进行的前处理,参照药典标准试验,第一次进样发现进出来的峰不好,而且系统适用性里面4个杂质才出来2个,而且这两个杂质峰还拖尾,后来我用同一
HPLC专家: 您好! 最近我在摸索联苯的HPLC检测条件,药品购自沪试,99.5%GC色谱纯.药品溶于乙酸乙酯(分析纯),20ul进样,流动相为乙腈和水,1ml/min.当乙腈:水
分析:需要说明的是:1、主成分纯度分析显示是纯的,可能是辅料峰面积占比小的缘故;2、已确定此处为辅料峰,非主成分残留;3、换过几根不同厂家相同类型的柱子,都在此处有干扰;4、调整流动相比例不能将其分开
现有一个药物含有哌嗪环,不含有其他可电离的基团,整个分子成中性,若是使用盐酸成盐酸盐,其PKa在3.0左右(两个),使用C18柱,乙腈-水体系。若使用纯乙腈,则70min内不出峰,若是使用pH=2
最近在做曲咪新乳膏的加速试验,结果做出来很奇怪:光照5天和10天的醋酸曲安奈德含量比0天高约10%,尝试做了空白和色谱峰纯度检查,结果空白无干扰;色谱峰纯度显示在光照10天时醋酸曲安奈德峰是纯