取200ul脂质体10000rpm离心30分钟,取外层液加甲醇定容至5ml,另取脂质体200ul用甲醇稀释至5ml,然后超声20min,测两者荧光强度,代入标准曲线,不论是游离的还是破乳的计算
我想问一下各位脂质体的前辈,做好的脂质体在显微镜下观察如何做装片,就用溶液,加盖玻片就能看到吗?实验书上说用油镜,这个是要等玻片干了之后滴松柏油,还是直接滴在玻片上啊?做了好几次,也没看到圆形的东东
脂质体粒径不受控制dppc:胆固醇:dspe-peg2000为3:1:1一共5mg,溶剂是氯仿3ml,室温旋蒸的膜还算均匀,加入pbs直接超声下来,并在55度孵育1h,出现沉淀,超声后底部存留
本人现在用dppc 胆固醇和peg 摸索了空白脂质体,现在想用多肽修饰一下脂质体,使其具有靶向作用。目前的问题是多肽是现成的,并没有连接到磷脂或其它辅料上,我想在合成的时候把多肽联同其它的辅料一起旋
成膜类似图中这样?是正常的吗,有些地方很厚有些地方很薄!另外脂质溶液浓度是多少呢?我查文献是10-20mg\ml,我称了10mg磷脂和600mg聚乙二醇4000用10ml叔丁醇溶解的,因为如果是按照文
1、旋转蒸发15分钟后,观察茄形瓶底部富集有淡黄色稠状液体。2、继续旋蒸底部出现囊泡,旋转30Min后底部出现透明薄膜,1.5h后取下茄形瓶观察,底部薄膜由透明转为白色拔干状薄膜旋蒸2h后,茄形瓶底部
请教各位前辈们,中性脂质体包裹核酸超声过膜缩小粒径后,使用30k超滤管去除游离的核酸后发现超滤管吸附严重,膜下的游离液基本无核酸。这种情况该怎么解决?(已使用0.1M NaOH处理,以及bsa封闭