文献上报道,使用150umol剂量作用8小时可以诱导凋亡,我使用了250umol作用24小时,结果流式分析大部分细胞都坏死了,是我的剂量大了的缘故吗?还是作用时间太长了?我的MTT分析结果表明,细胞
最近在写论文,我做的是干细胞向软骨诱导,老师要我加一个量效依赖关系的图。就是随诱导剂的增加,诱导成功比率增加。各位大神谁知道应该怎么算这个数值吗?有没有什么简便的方法?
K562细胞是很好的研究细胞分化的模式细胞株。因下一步实验需要将K562细胞进行诱导使之向红系细胞转化,查资料显示主要有hemin, STI571等诱导剂,但我没能查到进一步的信息
各位站友好!我现在做的焦虑的课题,没找到合适的细胞,查资料下来打算养HT22细胞。但我查文献看到有站友说HT22需要诱导,所以我迷茫了。不知道该怎么办,怕后期需要诱导我实验做不走。。想请各位站友
我用pYES2.1质粒插入目的基因片段在酿酒酵母中表达目的蛋白,SDS-PAGE看不出表达的条带,就用6-His的单抗来做western检测,居然是在预计的位置诱导前有表达,诱导后没有表达,请教高手
求助:使用构建的重组质粒做原核表达,基因测序没问题,使用37℃6h,IPTG0.8mmol/l诱导表达,SDSpage的条带不明显,诱导不出来,用以前诱导成功的重组质粒做对照也不如以前诱导表达量
做hsp20的诱导表达,前期都没问题,我的目的蛋白是20.6kDa,但跑SDS时出不来目的条带,用IPTG诱导完,沸水浴煮沸10分后跑的,从maker来看是在25-35kDa间有诱导出来的,前三个
我有个60kD的蛋白原核表达成功了,然后又要表达它的 一个8kD片段,将质粒也转到表达稀有密码子的DE3里进行诱导了,但是SDS-PAGE胶显示未诱导和诱导的没有区别,那个8kD的肽段没诱导出来!太
我用的质粒是pBAD-HisA,菌株是大肠杆菌Nissle 1917,蛋白大小约61kda。30℃,终浓度为0.1%的阿拉伯糖诱导表达6h,8h,10,12h后均未见目的条带,并且空载体在目的条带