我想做Western blot ,可是在蛋白提取的时候普通的RIPA对皮肤组织根本没有作用,RIPA:2.5M Nacl ,Triton X-100,脱氧胆酸钠,20%SDS,1M Tris-Hcl
本人最近在研究一个小分子蛋白质,15kDa,用了两种裂解方法,一种是直接用1* SDS裂解,第二种是RIPA,配方为:50mM TRIS HCL, 150mmNACL,1%NP-40,1%脱氧胆酸钠
我在网上收到的配方大多是这样的50 mM Tris-HCl pH 7.4、150 mM NaCl、1 mM PMSF、1 mM EDTA、1% Triton x-100、1%脱氧胆酸钠、0
不知道下面的裂解液能否将细胞膜蛋白提取出来,请各位老师指点。Tris-HCl 50mM pH7.4;NaCl 150mM;NP-40:1%;脱氧胆酸钠:0.25%;EDTA:5mM;NaF:50mM
战友们,咨询一下,想要做膜蛋白与胞质蛋白的互作实验,例coip,选择哪种非离子型去垢剂比较合适,文献中有用NP-40,有用x-100,还有用两性去垢剂脱氧胆酸盐的,我想做细胞器膜蛋白和胞质蛋白的互作
如题,蛋白用TCA-DOC方法沉淀后,用rehydration buffer 溶解倒是很快就溶了,接着跑IEF,可是设置的电压应该达到5000V,但是最多达到约2800V就升不上去了.是因为脱氧胆酸
实验中我们会使用到不同的缓冲系统以及一些去垢剂,如常用于缓冲的Tris、HEPES、MPOS等等,去垢剂如NP40,Tween-20,TritonX 100,CHAPS,脱氧胆酸钠,SDS
处理上清具体的方法嘛!处理后要用来做WB。 我用TCA 加脱氧胆酸盐处理过,但效果都不是很好,不知道100%TCA配对了没,请问100%TCA就是100克TCA加到100毫升水中吗?
我在抽提细胞核骨架之前配制的溶解微丝微管的RSB-Magik抽提液(其中有1%Tween 40 和0.5%脱氧胆酸钠,来源于翟中和),发现其呈现乳浊液状。是不是我配制有问题,请高手指点
我的蛋白的裂解液配方如下:50uM Tris-HCL(pH 8.0)150uM Nacl5mM EDTA0.5% NP-401mM DTT5g/L 脱氧胆酸钠100mg/L PMSFAprotin
胰腺炎模型是用牛磺胆酸钠还是牛磺脱氧胆酸钠? 查阅大量文献都提示用牛磺胆酸钠制作胰腺炎模型,但是也有少量文献采用牛磺 脱氧 胆酸钠造模。 请问各位战友,两种造模方法有何不同?那种更好
弱弱的问问高手:我想做肺组织,组织裂解液(10% W/V)有一个配方:(50 mM Tris、150 mM NaCl、1% TritonX-100、0.5% 脱氧胆酸钠、1 mM PMSF、0
处理上清具体的方法嘛!处理后要用来做WB。 我用TCA 加脱氧胆酸盐处理过,但效果都不是很好,不知道100%TCA配对了没,请问100%TCA就是100克TCA加到100毫升水中吗?