大家在做大鼠脑组织TTC染色,脑组织切片的时候,是拿什么东西怎么切的啊?我就把脑组织零下20度冻上20分钟,出来拿一个老式的刮胡刀片大概比划着切,总有些厚薄不均一,脑子做完后,边总看着有点毛毛燥燥
近日做鼠脑缺血模型,为了图省事没做栓线,而结扎右侧颈外动脉,颈内动脉,颈总动脉,18小时后取脑做ttc染色,发现有的脑片上双侧都有梗死染色,问下高手是怎么回事,按理说应该只有左侧才有梗死.附图
我在园子里搜了很多关于TTC的帖子,想知道大家都是怎么进行结果处理的,发现大家推荐IPP和photoshop比较多,我在网上自己搜了半天没下来那个软件,所以想请教知道这方面知识的朋友都有什么方法
我看文献中介绍做TTC染色时把整个心脏都给染啦,感觉有点可惜,好不容易做成一只就这样没了。我还需要做石蜡包埋呢。有没有哪位战友又两者兼顾的好方法?如是否可以一个心脏一半做染色一半做包埋?及具体
线栓法致大鼠脑中动脉缺血,取脑TTC染色后切片,一般切成5-6片,每隔2mm切一片。第一刀在脑前极与视交叉连线中点处;第二刀在视交叉部位;第三刀在漏斗柄部位;第四刀在漏斗柄与后叶尾极之间。(参考
我现在做小鼠的MCAO模型,问下做过此模型的高手,在造模成功后进行灌注,用生理盐水和多聚甲醛灌注,然后进行TTC染色可以吗??也就是说用多聚甲醛灌注后的大脑可以进行TTC染色吗??多聚甲醛对TTC
我们在做心肌梗死后TTC染色时,出现了问题 :染色后总是没有白色区域出现!试过改进各种试验方法,比如1.重新用磷酸盐缓冲液配置1%TTC,PH=7.42.染色时,37度,10分钟,或室温半小时
我的细胞有再一次的被污染了,啊啊啊这次培养基还是变成粉色浑浊,但是我百度没有搜到答案,想请大家给我看看。这是培养基肉眼观这是显微镜下看到的细菌。还有一个小动图可以看到所有细菌在做布朗运动,所有细菌
图一图二是只做了Evans Blue染色的,图三是Evans Blue染色后进行TTC染色再4%甲醛固定过夜后拍摄所得。想请教园子里的战友们三个问题:1.图一图二Evans blue染色算成功