最近买了一批抗体,本来保存温度是在2-8度,可是运输过程中抗体结冰了,收到后放入4度冰箱过夜后抗体融化,但是有黄色油状物质出现在下层,反复颠倒几次油状物质仍然存在,不知道是什么东西析出,请教各位这种
药物极性小,用DMSO溶解了,加培养液稀释的时候又析出了,从不少论坛上看到有人拿吐温80和乙醇助溶,想问下大家都是怎么加,还有就是吐温80和乙醇在细胞培养液中允许的最高浓度各是多少,可不可以就加吐温呢
水提法提取黄酮,最后用加酸让黄酮析出,如何得到较纯的黄酮结晶?(黄酮是浅黄色,但是每次洗完都是灰色,而且洗的时候总是把结晶洗越洗越少)请问各位大侠,有没有好的方法去掉母液,而结晶的量不会减少很多。
各位好,本人用水溶性的一些高分子材料合成一个粗产物,最后倒入四氢呋喃中产生析出,按文献本应将此粗产物再次纯化,可是等四氢呋喃挥干后,本应该水溶的产物,无论在水中还是乙醇、CH3CL2, DMSO中
使用Millipore的Amicon超滤管超滤脱imidazol盐,更换buffer,三次离心,每次30min,前两次都很正常,但第三次出现严重的蛋白析出,附着在超滤管内壁,不仅堵了管子,辛辛苦苦
现做一注射液,处方中含有10%的吐温80,与国外处方一致,主药溶解后,降至室温,灌装,灭菌,观察灭菌后药液澄明,但当灭菌后的药液降至室温,发现主药析出,药液变的很混浊。将变浑浊后的装有药液的玻璃安瓿
在制备壳聚糖/贝塔-甘油磷酸钠混合液时出现乳白色析出,求助改进方法1.试剂:壳聚糖 麦克林 85% 90% 95%脱乙酰度都试了一遍,都有这个问题,GP用的sigma的五水合物2.壳聚糖溶解在0.1
最近在对托伐普坦的一个杂质进行纯度分析,流动相是乙腈/水,波长254,。开始样品用乙腈溶解,进样后发现目标峰后带有一个小峰。合成的同事确定不应该有那个小峰。后样品用乙腈、水溶解,发现样品被析出
复性时采用了透析复性和稀释复性两种方法,透析复性是将包涵体溶液稀释30倍左右,稀释复性是将1ml包涵体溶液加到200ml复性液中,4度搅拌过夜。但是两种方法都出现了蛋白的析出。复性液是20mM
了个冻而已。现在把柱子也给堵了,真是无比心塞。这里有个疑问――大家超声波裂解时细菌都是悬在什么溶液里?我们实验室是用的中性pbs,裂解完离心,上清收集起来过滤后就可以过柱子纯化了。不知道析出与上清